IF:17.3《ACS Nano》苏州大学肖灿/李斌/韩凤选:智能微针可调节活性氧物质和释放基质金属蛋白酶以治疗病理性疤痕
专栏:学术前沿
发布日期:2026-09-11
作者:创赛科研

研究背景:

病理性瘢痕包括增生性瘢痕和瘢痕疙瘩,是皮肤创伤、烧伤或手术后最常见的异常愈合表现,全球超过三分之一的手术患者、近七成烧伤患者都会形成明显瘢痕,严重影响外观、皮肤弹性甚至肢体功能,伴随长期红肿、瘙痒、疼痛。目前公认瘢痕形成的核心病理机制是氧化应激持续升高、胶原过度异常沉积、慢性炎症长期不消,三者互相促进、恶性循环。现有治疗包括外用药物、激光、手术切除、注射等,效果有限、复发率高、创伤或副作用明显,临床上迫切需要一种能同时靶向氧化、纤维化、炎症、微创、精准高效的新治疗手段。



1789105681776085551.png

针对上述问题,苏州大学肖灿、李斌、韩凤选等人研究团队针对瘢痕三大核心病理,设计并制备了一种响应型智能微针递送系统:以生物相容性海藻酸盐水凝胶为载体,负载中空二氧化锰纳米酶(hMNP)与基质金属蛋白酶(MMP),通过简单、可规模化制备工艺,构建能自动识别瘢痕高ROS环境、局部释放、精准治疗的微针;团队从材料表征、体外细胞实验、再到兔耳瘢痕模型、与人皮肤高度相似的巴马小型猪瘢痕模型,层层验证:微针机械强度好、可顺利刺入瘢痕、降解可控;体外能高效清除ROS、下调纤维化、抑制炎症;体内能明显变薄、变软、颜色变淡、胶原排列恢复正常,为病理性瘢痕提供一种微创、安全、多靶点、高转化潜力的新方案。该文章于2026年5月18日以Smart Microneedles Regulate Reactive Oxygen Species and Deliver Matrix Metalloproteinases for Pathological Scar Treatment为题发表于ACS Nano》(DOI: 10.1021/acsnano.6c00171)。


研究示意图.jpg

方案1. 智能微针治疗病理性瘢痕示意图

(1)瘢痕疙瘩和正常组织的单细胞RNA测序分析

对瘢痕疙瘩和正常组织进行生物信息学分析,UMAP算法将数据降维至二维空间,共鉴定并注释出17个不同的细胞簇(图1A,B)。基于经典标志物鉴定出不同的细胞类型,包括巨噬细胞(IL-1β/Lyz)、成纤维细胞(Col1a2/Col1a1)、内皮细胞(Pecam1/Vwf)、肥大细胞(Tpsab1/Tpsab2)和角质形成细胞(Krt1/Krt14)(图1C)。UMAP图还展示了各细胞类型在二维空间中的聚类分布(图1D,E)。通过小提琴图比较瘢痕疙瘩与正常组织中抗氧化相关基因SOD1和CAT的表达,结果显示瘢痕疙瘩组织中SOD1表达显著降低,而CAT的差异表达较小(图1F)。点图进一步显示,SOD1和CAT在正常组织中的表达水平和比例均高于瘢痕疙瘩组织(图1G)。这些发现表明瘢痕疙瘩组织处于氧化应激增强状态,提示氧化应激可能在瘢痕疙瘩的形成和进展中发挥关键作用。


图1.jpg

1. 瘢痕疙瘩和正常组织的单细胞RNA测序分析a)瘢痕疙瘩和b)正常组织的UMAP聚类图。c)细胞类型表达点图。d,e)分别为瘢痕疙瘩和正常组织中内皮细胞、成纤维细胞、巨噬细胞、角质形成细胞和肥大细胞的UMAP细胞类型注释图。f)瘢痕疙瘩和正常组织中SOD1CAT表达的小提琴图。gSOD1CAT表达的点图。

(2)患者正常组织和瘢痕疙瘩组织的组织学染色

为探究正常组织与瘢痕疙瘩组织之间的差异,该团队收集了PS患者的手术样本进行组织学染色。队列包含4名女性和1名男性,年龄在18至38岁之间(图2A),瘢痕位于下颌、前臂、耳部和胸部,病理分型包括增生性瘢痕、瘢痕疙瘩及两者混合型(图2B)。H&E和Masson三色染色显示,与正常组织相比,瘢痕组织真皮层明显增厚,胶原纤维排列紊乱,并伴有炎症细胞浸润(图2C)。Masson三色染色进一步证实了胶原过度增殖和纤维排列不规则(图2D)。CD31免疫组化染色显示瘢痕组织中CD31表达显著升高,提示血管化增强在瘢痕形成和进展中起关键作用(图2E)。此外,DHE染色结果显示瘢痕组织中ROS水平显著增加,表明氧化应激是瘢痕疙瘩发病的关键因素(图2F)。上述结果提示,胶原过度增殖、氧化应激和血管化增加是瘢痕疙瘩形成的核心因素,为PS的治疗提供了潜在靶点。


图2.jpg

图2. 患者正常组织和瘢痕疙瘩组织的组织学染色。a)病理性瘢痕患者的基本信息。b)不同供体瘢痕部位的照片。c)NS组织和PS组织的H&E染色及d)Masson三色染色。e)NS组织和PS组织中CD31的免疫组化染色。f)NS组织和PS组织的DHE染色。

(3)hMNP、hMNP/AlgMA复合水凝胶和复合微针的表征

hMNP采用硬模板法合成:以二氧化硅纳米颗粒为球形模板,在其表面沉积二氧化锰,再经化学刻蚀去除硅模板。透射电子显微镜(TEM)显示颗粒直径约为200 nm,并确认其空心结构(图3A);能量色散X射线光谱(EDS)元素分析显示氧(O)和锰(Mn)的分布,证实了hMNP的成功合成。扫描电子显微镜(SEM)图像显示,纯AlgMA水凝胶(经蓝光照射交联)具有明显疏松多孔的结构;随着hMNP的加入,水凝胶孔结构发生显著变化,当hMNP浓度为1%时孔结构明显塌陷(图3B)。制备复合微针时,将前驱体溶液注入带有微针阵列图案的PDMS模具中,光交联后脱模并干燥;掺杂hMNP后针尖呈现不透明的黑色,表明hMNP成功掺入(图3C)。实物照片和SEM图像显示,微针呈锥形、排列有序,高度约为500 μm,基底直径约为260 μm(图3D)。为增强机械强度,复合微针经液氮冷冻处理成为冷冻微针(cryo-MN)。力学压缩测试表明,每根微针可承受约0.5 N的力,高于穿透皮肤所需的临界力(图3E-G);猪皮穿刺实验进一步证实微针具有优异的穿刺性能,且穿刺后未发生明显形变或弯曲(图3H)。此外,插入后第7天约20%的微针降解,第14天约50%降解,第21天针尖已基本降解(图3I),这种渐进式降解特性支持药物的持续递送。


图3.jpg

图3. hMNP、hMNP/AlgMA复合水凝胶及复合微针的表征。a)hMNP的TEM图像及EDS元素分析。b)不同hMNP浓度复合水凝胶的SEM图像。c)hMNP/AlgMA-0.5%复合微针的SEM图像。d)AlgMA微针和hMNP/AlgMA-0.5%复合微针的实物照片。e-g)hMNP/AlgMA-0.5%复合微针的力学测试。h)微针在猪皮中的穿刺性能(H&E染色)。i)hMNP/AlgMA-0.5%复合微针的体内降解性能。

(4)复合水凝胶的生物相容性、抗炎和抗氧化性能

为评价复合水凝胶的生物相容性,将人皮肤成纤维细胞(HSFs)接种于其表面。活/死染色结果显示,除hMNP/AlgMA-1%水凝胶出现较多死细胞外,其余配方中的细胞活力均较高(图4A)。细胞骨架染色进一步显示,AlgMA、hMNP/AlgMA-0.25%和hMNP/AlgMA-0.5%水凝胶上的HSFs铺展良好,而hMNP/AlgMA-1%水凝胶上的细胞出现明显皱缩,提示该浓度下存在细胞毒性(图4B)。CCK-8检测结果表明前三组之间细胞增殖无显著差异,而hMNP/AlgMA-1%组细胞增殖明显受抑(图4C),因此选择hMNP/AlgMA-0.5%复合水凝胶进行后续实验。PS组织与氧化应激密切相关,常表现为H₂O₂过量产生。该团队研究了MMP1负载的hMNP/AlgMA复合水凝胶在H₂O₂存在下的释药行为:hMNP对MMP1的包封效率为50.9 ± 2.6%;载药水凝胶暴露于H₂O₂后,MMP1的释放显著加速,凸显了体系的ROS响应性释药特性(图4D)。此外,从人PS组织中分离出病理性成纤维细胞,复合水凝胶处理后其胞内ROS水平显著降低,表明其具有有效的抗氧化性能(图4E)。通过蛋白质印迹和qPCR分析发现,单独使用AlgMA水凝胶对相关标志物的表达无显著影响;相比之下,hMNP/AlgMA复合水凝胶显著上调抗氧化相关蛋白(CAT和SOD)及抗炎细胞因子(IL-10)的表达,同时下调促炎细胞因子(TNF-α)和纤维化相关蛋白(TGF-β1)的表达(图4F),基因表达水平呈相似趋势(图4G)。解耦实验进一步表明,单独递送MMP-1虽表现出一定的ECM重塑效果,但在清除ROS后这些效果显著增强,证明ROS调控与MMP-1活性之间存在正向协同效应。


图4.jpg

图4. 复合水凝胶的生物相容性、抗炎和抗氧化性能。a)接种于复合水凝胶上的人皮肤成纤维细胞(HSFs)活/死染色;b)细胞骨架染色图像。c)HSFs的CCK-8检测。d)MMP1从复合水凝胶中在不同条件下的体外释放行为。e)通过DCFH-DA染色评价不同水凝胶在成纤维细胞中的ROS清除性能。f)复合水凝胶对瘢痕来源成纤维细胞中抗氧化、炎症和纤维化相关蛋白表达的影响。g)对相应基因表达的影响。

(5)复合微针在兔耳病理性瘢痕模型中的体内疗效

为评价复合微针的体内治疗效果,建立了兔耳PS模型,并将动物随机分为五组:生理盐水组、PS组、AlgMA组、hMNP/AlgMA组和MMP1@hMNP/AlgMA组(图5A)。治疗前,该团队首先验证了复合微针的有效性与安全性:采用DQ-胶原荧光法评估MMP-1在微针制备、UV交联和储存过程中的酶学稳定性,发现约86.4%的原始MMP-1活性得以保留,且MMP-1在4°C储存3周后酶活性无显著下降;微针植入4周后对主要脏器(心、肝、脾、肺、肾)进行H&E染色,未观察到明显的组织病理学变化。于建模后第30天开始治疗,并在不同时间点监测瘢痕形成情况(图5B,C)。治疗26天后,MMP1@hMNP/AlgMA组的创面明显比PS组平滑,瘢痕边界基本消失;而不含MMP1的复合微针疗效有限。同时,对瘢痕旁皮肤进行分析,未观察到明显的胶原丢失、结构破坏、萎缩或溃疡,表明MMP-1的治疗活性主要局限于纤维化组织,脱靶ECM降解被降至最低。植入后第7天对术区进行DHE染色和免疫荧光染色:MMP1@hMNP/AlgMA组的荧光强度显著降低,证实载MMP1复合微针可有效清除ROS(图5D);抗氧化相关蛋白(SOD和CAT)及抗炎蛋白(IL-10)的表达在治疗后显著升高,其中MMP1@hMNP/AlgMA组荧光强度最强、染色面积最大(图5E);促炎蛋白TNF-α在PS组显著升高,经MMP1@hMNP/AlgMA治疗后其水平基本恢复至正常水平(图5F)。这些结果表明,载MMP1复合微针通过清除ROS和抗炎作用调控局部创面微环境,最终抑制瘢痕形成。


图5.jpg

图5. 复合微针在兔耳PS模型中体内治疗效果的评价。a)PS模型建立及治疗效果评价示意图。b)不同时间点PS模型的实物照片。c)复合微针治疗后不同时间点瘢痕区域的实物照片。d)不同干预下的DHE染色图像。e)SOD、CAT和IL-10的免疫荧光染色。f)TNF-α的免疫荧光染色。

(6)不同微针治疗后兔耳病理性瘢痕的组织学评估

通过H&E和Masson三色染色评估不同处理后PS创面的变化(图6A,B)。治疗前,PS组真皮层可见致密排列的成纤维细胞和增厚的胶原束;经MMP1@hMNP/AlgMA复合微针治疗后,PS组织厚度显著降低,放大图像进一步显示胶原沉积明显减少、成纤维细胞排列更加有序,组织结构得到改善。TGF-β是PS形成的关键调控因子,可通过Smad依赖和非依赖途径促进ECM合成并抑制MMPs,导致胶原过度沉积;瘢痕组织中I型胶原积累、III型胶原比例降低,成纤维细胞向肌成纤维细胞分化,导致组织僵硬和瘢痕挛缩。为进一步验证疗效,对关键纤维化相关蛋白进行免疫荧光染色。结果显示,与对照组相比,PS组织中α-SMA、CTGF、COL1和TGF-β1的荧光强度显著升高,表明纤维化程度增强;而经hMNP/AlgMA和MMP1@hMNP/AlgMA复合微针治疗后,这些蛋白的荧光强度明显降低,其中MMP1@hMNP/AlgMA组治疗效果最为显著(图6C)。上述结果凸显了MMP1@hMNP/AlgMA复合微针通过调控关键纤维化相关蛋白的表达来减轻PS纤维化的能力。


图6.jpg

图6. 不同微针处理的兔耳PS的组织学染色。a)H&E和b)Masson三色染色。c)纤维化相关蛋白的免疫荧光染色:α-SMA、CTGF、COL1和TGF-β1。

(7)复合微针在猪皮肤病理性瘢痕模型中的体内疗效

为评估临床转化潜力,该团队在5至6月龄巴马小型猪中通过皮肤烫伤建立了PS模型(图7A)。猪皮肤在解剖和生理特性上与人类皮肤高度相似,其PS模型具有很高的临床转化相关性。与兔耳模型的结果一致,PS组ROS水平显著升高,经MMP1@hMNP/AlgMA复合微针治疗后显著降低。H&E和Masson三色染色显示:治疗前PS组真皮层富含成纤维细胞和粗大的胶原束;复合微针治疗后,PS组织厚度显著降低,放大图像显示胶原沉积大幅减少、成纤维细胞排列更加有序(图7B,C)。进一步的免疫组化染色显示,纤维化相关蛋白(α-SMA和TGF-β)及促炎蛋白(TNF-α)在PS组中显著升高,经复合微针治疗后其表达水平下调,而抗炎蛋白呈相反趋势(图7D);IL-10在复合微针治疗后显著上调,凸显了该治疗的抗炎潜力(图7E)。结果表明,MMP1@hMNP/AlgMA复合微针在兔耳PS模型中展现出更优疗效,在猪皮肤PS模型中同样具有可观的治疗效果,凸显了该方法用于临床应用的潜力。


图7.jpg

图7. 猪皮肤PS模型体内治疗效果的评价。a)猪皮肤瘢痕形成的实物照片。b)不同干预下的H&E和c)Masson三色染色图像。d)纤维化相关蛋白的免疫组化染色。e)炎症相关蛋白的免疫组化染色。

 研究小结 

研究针对病理性瘢痕氧化应激、胶原异常、慢性炎症三大核心难题,成功开发一种ROS响应型智能微针:以海藻酸盐水凝胶为载体,负载中空二氧化锰纳米酶与基质金属蛋白酶,可微创刺入瘢痕、在高ROS环境下精准释放,同步清除氧化应激、降解异常胶原、抑制慢性炎症、促进皮肤修复;通过材料表征、体外细胞实验、兔耳与小型猪体内模型系统验证,证明微针安全、有效、可控、易制备,为病理性瘢痕提供一种多靶点、微创、可临床转化的全新治疗策略,也为后续瘢痕相关临床研究奠定坚实基础。

上一页:找不到相关信息
下一页:IF:29.1《AM》广西医科大学钟敬平/中国科学院樊克龙:Fe-Mn双原子纳米酶,通过抑制细胞焦亡,有效缓解骨关节炎等多种炎症性疾病

创赛生物 提供高品质的医疗产品和服务
                       让人类生活得更健康和更美好

联系我们

广州创赛生物医用材料有限公司
地址:广州市黄埔区科学城掬泉路3号国际企业孵化器A区702
电话:
020-3202 9909

手机:180 2452 3356

自研材料

扫码关注

1704848311194088584.jpg      1744178484532037199.jpg

         关注公众号                       扫码加客服